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第一章 动物生理学实验基础1

一、生理学实验课的目的和要求1

（一）实验课的目的和要求1

（二）实验结果的记录2

（三）实验报告的撰写3

二、动物生理学实验器械及其操作方法3

（一）手术器械4

（二）其他器械5

（三）器械的消毒6

三、动物生理学实验仪器7

（一）电刺激系统7

（二）生命维持系统9

（三）信号采集系统10

（四）计算机生物信号实验系统12

四、实验动物操作技术19

（一）常用实验动物介绍19

（二）动物的标记21

（三）动物的抓取21

（四）动物的给药方法23

（五）动物的麻醉25

（六）动物体液采集技术28

（七）实验动物的处死和护理方法30

（八）动物生理手术基本操作技术31

（九）部分动物生理学慢性实验手术方法34

第二章 神经和肌肉38

实验1 蟾蜍坐骨神经-腓肠肌标本的制备38

实验2 生物电现象的观察40

实验3 刺激强度与肌肉收缩的关系41

实验4 强度-时间曲线的测定42

实验5 神经干动作电位观察及其传导速度的测定43

实验6 神经干不应期的测定46

实验7 骨骼肌的单收缩和复合收缩47

第三章 血液49

实验8 血液组成和红细胞比容的测定49

实验9 血细胞计数51

实验10 血红蛋白含量的测定54

实验11 红细胞渗透脆性的测定55

实验12 红细胞沉降率的测定57

实验13 血量的测定58

实验14 白细胞分类59

实验15 白细胞的机能61

实验16 血液凝固63

实验17 ABO血型鉴定和交叉配血64

第四章 血液循环67

实验18 蛙心起搏点分析67

实验19 离体蛙心灌流68

实验20 期前收缩和代偿间歇70

实验21 容积导体及心电传导72

实验22 心电图描记74

实验23 心电与收缩活动的时相关系76

实验24 蛙肠系膜微循环观察77

实验25 动脉血压的直接测定及其影响因素79

实验26 减压神经放电81

第五章 呼吸84

实验27 胸膜腔内压的测定84

实验28 呼吸运动的调节85

第六章 消化和能量代谢88

实验29 胃肠运动的直接观察88

实验30 消化道平滑肌的生理特性89

实验31 小肠吸收与渗透压的关系91

实验32 小鼠能量代谢的测定92

第七章 泌尿94

实验33 影响尿生成的因素94

第八章 神经96

实验34 反射弧的分析96

实验35 脊髓背根和腹根的机能98

实验36 脊髓反射99

实验37 交互抑制100

实验38 小脑的生理作用101

实验39 大脑皮层的诱发电位103

实验40 大脑皮层运动区的定位104

实验41 去大脑僵直106

实验42 迷路的破坏107

实验43 血-脑屏障108

第九章 内分泌和生殖110

实验44 甲状腺素对蝌蚪变态的影响110

实验45 胰岛素和肾上腺素对血糖水平的调节111

实验46 摘除肾上腺对动物的影响112

实验47 甲状旁腺摘除对血钙水平的影响113

实验48 垂体摘除对体内某些内分泌腺的影响114

实验49 雄激素对鸡冠发育的作用115

实验50 雌激素对雌性动物副性器官发育的影响116

实验51 大鼠离体子宫平滑肌的运动描记118

实验52 蛙的受精及卵裂的观察120

第十章 动物生理学实验试题122

一、实验试题122

（一）选择题122

（二）名词解释129

（三）问答题129

（四）实验考试例题131

二、实验试题答案131

（一）选择题131

（二）名词解释题132

（三）问答题135

（四）实验考试例题答案146

主要参考文献149

附录150

附录1 常用生理盐溶液的配制150

附录2 常用抗凝剂151

附录3 实验设计151

附录4 常用统计指标和方法153

附录5 综合性实验示例：消化液的消化作用及其分泌的调节156